试剂盒内容 |
50次 货号cat:FG110 |
200次货号cat:FG120 |
过滤柱 Filter Column |
50 |
200 |
吸附柱 Spin Column |
50 |
200 |
平衡溶液EB EquilibrationBuffer |
15ml |
50ml |
结合树脂液 Matrix |
10 ml |
50 ml |
溶液W2 Buffer W2 |
15 ml |
30 ml |
溶液TE TE Buffer |
15 ml |
15 ml |
说明书 Specification |
1 |
1 |
贮存条件:
室温,有效期三年。
产品简介
※ 无需溶胶,直接过柱粉碎。目的DNA带从凝胶上切下来后,通过离心粉碎,一次溶出,再采用硅胶膜吸附柱吸附,DNA便可用去离子水(或低盐缓冲液)洗脱出。能从各个等级的琼脂糖凝胶中回收到8bp-40kp的DNA带,且回收率达75%。
※ 标准量的树脂,最大吸附量为60ug,实验结果可重复性好。
※ 纯度好, 直接可以用于酶切、转化、PCR、体外转录、测序等各种分子生物学实验。
操作步骤:
1. 试验前准备及注意事项
■请尽量采用浓度1.0~1.5%的琼脂糖凝胶(胶浓度过大粉碎不测底,太小,溶胶漏掉)
■结合树脂液、溶液W2.使用前请按标签加入无水乙醇并标示。
7. 再漂洗 将500μl的溶液W2加入Spin Column中,12000rpm离心30-60秒,弃滤液。 空柱12000rpm再离心2分钟,除去残留乙醇。
8. 洗脱 将Spin Column按置于新的洁净的1.5ml的离心管上,在吸附柱膜和树脂的处加入30-100μl的水或TE Buffer,室温静置1分钟,12000rpm离心1分钟洗脱DNA,可立即用于下游分子生物学实验或-20℃保存。
注意:Elution Buffer 组成为1 mM EDTA和2.5mM Tris-HCI (pH8.5),不影响测序和酶切反应。把水或洗脱液加热于60℃使用时有利于提高洗脱液效率,如果提取的质粒>10kb,请将洗脱液预热至65℃,并适当延长洗脱时间。
注意事项:
1.请尽量采用浓度1.0~1.5%的琼脂糖凝胶。(胶浓度过大粉碎不彻底,太小,溶胶漏掉)
2.琼脂糖凝胶要求新配制、刚刚跑过电泳的。电泳缓冲液,也要求新配制的。
3.如下一步实验要求较高,则应尽量使用TAE电泳缓冲液。
4.切胶时,紫外照射时间应尽量短,以免对DNA造成损伤。
DNA浓度和纯度检测
OD260值为1,相当于50ug/ml的双链DNA。也可以通过DNA Marker通过琼脂糖凝胶电泳半定量。
OD260/ OD280比值一般为1.7-1.8,如果洗脱时不使用缓冲液,而使用去离子水,由于受PH值和离子浓度的影响,比值会偏低。